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明胶酶普试剂盒(MMP2/MMP9)的正确使用方法

点击次数:615   发布时间:2023/2/22 15:39:30

明胶酶普试剂盒(MMP2/MMP9)的正确使用方法


MMP检测样本注意事项:

细胞培养基要用无血清培养基;

样本裂解时不含EDTA;

明胶酶谱的活性受钙离子,锌离子,和PH值等因素的影响,因此缓冲液 配制应严格准确,尽量用超纯水,孵育温度也掌握好。




检测出来实例

因为检测蛋白活性,所以应尽量避免蛋白变性,我们一般都要求冰上操作,电泳也放在冰水里进行的。

染色步骤:
1. 此染色液即为工作液,使用时直接将聚丙烯酰胺凝胶放在培养皿中以考马斯亮蓝染色液覆盖凝
胶,并缓慢摇动2h;
2. 倾去染色液,用脱色液冲洗凝胶;
3. 以脱色液覆盖凝胶,缓慢摇动2h,倾去脱色液,再加入新脱色液进行脱色,直至获得清晰的蓝色的条带和干净的背景(通常此过程需要2~4h,也可脱色过夜至清晰的蓝色的条带和干净的背景);
4. 对凝胶进行分析和照相,凝胶可放置在7%的乙酸中保存。也可用凝胶干胶装置对
凝胶进行处理后保存。
安全性:无特殊毒性,按一般化学品操作规程处理。


关于信帆生物的明胶酶谱法试剂盒里面的substrateG是10×的使用方法说明:substrateG是10×使用说明:看老师配多少胶,比如老师用10ml的胶,就往里边加1ml的substrateG就可以了。将凝胶放在扫描仪上扫描。虽然MMP条带透明,但凝胶背景并非真正全黑。解决办法:可用非透射光扫描,或用软件图像处理程序调整背景显示为灰度显示,并尽量设置为黑色。MMP条带则为白色 。

使用我司明胶酶谱试剂盒发表的文献:
本试剂盒采用凝胶反相酶谱法(Zymography)检测MMP-2、MMP-9 活性及其无活性前体酶原谱系。Zymography 是一种广为使用的、基于SDS-PAGE 电泳和反相凝胶染色的蛋白酶检测方法,其灵敏度可达1 nM,高于ELISA方法,其基本原理和程序是:制备含有胶原酶底物的SDS-PAGE凝胶,含蛋白酶的样品在此凝胶中进行电泳,电泳时SDS与样本中的MMP可逆性结合,导致MMP氢键和疏水键破坏而不能发挥分解明胶的作用。电泳结束后取出凝胶与酶反应Buffer孵育,MMP恢复活性,凝胶中由于含底物蛋白而被深染,形成深色背景,但在有蛋白酶条带的位置,蛋白酶将降解凝胶中的底物蛋白,因而不被染色而形成透亮区域,从而能同时指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶谱)及活性。本试剂盒提供MMP-2、MMP-9 特异蛋白底物及酶学反应缓冲液,可检测少至0.1~0.5 μl 血液中的MMP-2、MMP-9 酶谱及活性,检测灵敏度~1nM。试剂盒可进行25-50次标准小胶检测(如果样本MMP含量高,孵育时间短,不用换液可*多50次),如果小胶加样孔为10~15个,则总计可*多检测500~750个样品。

本试剂盒采用凝胶反相酶谱法(Zymography)检测MMP-2、MMP-9 活性及其无活性前体酶原谱系。Zymography 是一种广为使用的、基于SDS-PAGE 电泳和反相凝胶染色的蛋白酶检测方法,其灵敏度可达1 nM,高于ELISA方法,其基本原理和程序是:制备含有胶原酶底物的SDS-PAGE凝胶,含蛋白酶的样品在此凝胶中进行电泳,电泳时SDS与样本中的MMP可逆性结合,导致MMP氢键和疏水键破坏而不能发挥分解明胶的作用。电泳结束后取出凝胶与酶反应Buffer孵育,MMP恢复活性,凝胶中由于含底物蛋白而被深染,形成深色背景,但在有蛋白酶条带的位置,蛋白酶将降解凝胶中的底物蛋白,因而不被染色而形成透亮区域,从而能同时指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶谱)及活性。本试剂盒提供MMP-2、MMP-9 特异蛋白底物及酶学反应缓冲液,可检测少至0.1~0.5 μl 血液中的MMP-2、MMP-9 酶谱及活性,检测灵敏度~1nM。试剂盒可进行25-50次标准小胶检测(如果样本MMP含量高,孵育时间短,不用换液可*多50次),如果小胶加样孔为10~15个,则总计可*多检测500~750个样品。

明胶酶普试剂盒(MMP2/MMP9)的正确使用方法

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